Məlumat

Avstraliya, NT-də tapılan iki hörümçək növünün şəxsiyyət vəsiqəsi üçün sorğu

Avstraliya, NT-də tapılan iki hörümçək növünün şəxsiyyət vəsiqəsi üçün sorğu


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Bu iki hörümçək Avstraliyanın Şimal Ərazisində iyul ayında (qış vaxtı) tapılıb. Hər iki araknid gecə ərzində vuruldu (mən onlardan şübhələnirəm gecə) və hər ikisi yaxınlığında tapıldı torpaq. Məncə (çox böyük) şəbəkələr qurmurlar.

Üst hörümçək olduqcadır böyük, olduqca əl ölçüsündə və quş yeyən hörümçək qədər böyükdür. Düşünürəm ki, bizimlə olan oğlan bunun bir növ olduğunu söylədi canavar hörümçək (düzgün xatırlayıramsa - əmin deyiləm). Aşağıdakı tüklü hörümçək gözəl kamuflyajı ilə bir qədər kiçikdir (düzgün xatırlayıramsa), lakin hələ də yaxşı ölçülüdür.

Mən onların adlarını axtarırdım, lakin hörümçək növlərinin sayı həddən artıq çoxdur və avstraliyalılar onlayn resursları zəhərli olanlara yönəldirlər. Bu ikisinin zərərsiz olduğuna tam əminəm.


Aşağıdakı, şübhəsiz ki, Ovçudur. a oxşar bir şey Holconia immanis, aka Sidney Huntsman. Şəkil çətindir, lakin xarakterik bir Huntsmanın adətən arxa ayaqlarından daha uzun olan 2 ön ayağı var. Və təbii ki, onlar daha böyük hörümçəklər olurlar.


Holconia immanis. mənbə: Vikipediya

Üstü bir növ fırçalanmış qapı hörümçəyinə bənzəyir (ailə Barychelidae), adətən kimi növlərdən ibarətdir İdiommata scintillans, başındakı saçın rəngindən asılı olaraq gümüş və ya qızıl arxa kimi tanınır (ref).

Idiommata sp., 'Gümüş Beyin'. mənbə: Archne.org.au


Avstraliya litokollu qarışqaların iki növünün müqayisəli yuva biologiyası: Polyrhachis (Hedomyrma) turneri Forel və P. (Hagiomyrma) sonelda Forel (Hymenoptera: Formicidae: Formicinae)

Tropik Biologiya Məktəbi, Ceyms Kuk Universiteti, Qld 4811, Avstraliya.

Tropik Biologiya Məktəbi, James Cook Universiteti, Qld 4811, Avstraliya.

Mücərrəd

mücərrəd Hər ikisinin yuvası Polyrhachis (Hagiomyrma) soneldaP. (Hedomirma) torner qaya divarlarının kənarları ilə məhdudlaşır (litokoliya), lakin oxşar yuva yerlərinə baxmayaraq, yuvalar istifadə olunan tikinti materialının növlərinə görə fərqlənir. yuvalarının divarları P. Sonelda heç bir ipək olmadan karton materialdan tikilir, olanlar isə P. turneri çox az karton olan qalın və diffuz tüklü ipək kütləsindən ibarətdir. Ancaq digər növlərdən fərqli olaraq Polyrhachis ipək yuvalarında yaşayanlar, yuvalarındakı ipək materialı P. turneri tamamilə hörümçəklər tərəfindən istehsal olunur, öz sürfələri deyil. Taranan elektron mikroskop təbii ipəklərin tapıldığını göstərdi P. turneri yuvalar öz sürfələrinin baramalarında olan iplərdən çox, yaxınlıqdakı hörümçək yumurtası kisələrinə bənzəyirdi. P. turneri xarici ipək mənbəyi olmadığı halda ipək yuvaları istehsal edə bilmədi. Bu nəticələr: cins daxilində əlavə yuva salma vərdişinin mövcudluğunu təsdiq edir, litokoliya litokolyalı yuvalama vərdişlərinin təkamül edə biləcəyi ən azı iki yol olduğunu təklif edir, karton və ipək və yuvada ipəyin olması qarışqanın o demək olmadığını göstərir. sürfələr mənbəyidir. Cins daxilində yuva toxumasının yayılması və təkamülünün tədqiqi Polyrhachis ipək yuvalarının mövcudluğu faktiki olaraq iki müstəqil davranış əlamətinin (hörümçəklər kimi xarici mənbələrdən alınan ipək və sürfələrdən olan ipək) mənşəyini ifadə edə bildiyinə görə yenidən qiymətləndirilməli ola bilər.


Mücərrəd

Yırtıcılıq gözlənilməz dönüşlər edə bilər. Məsələn, müxtəlif onurğasız növləri - ən çox hörümçəklər - onurğalıları ovlaya bilər. Burada bir hörümçəyin (Sparassidae, Damastes sp.) amfibiya ilə qidalanan (Hyperoliidae, Heterixalus andrakata) şimal-şərq Madaqaskarda bir geri çəkilmə içərisində. Bildiyimizə görə, bu, Madaqaskarda hörümçəklər tərəfindən onurğalıların yırtıcı olması ilə bağlı ikinci hesabatdır. Eyni hörümçək növlərinin tikdiyi geri çəkilmə yerlərinin üç əlavə müşahidəsi göstərir ki, hörümçəklər oxşar sığınacaqlar tikib və geri çəkilmənin arxa ucunda gizləniblər. Geri çəkilmələr hələ də ağaca yapışdırılmış iki yaşıl yarpaq toxunaraq tikilmişdir. Müşahidələrə əsasən, geri çəkilmənin gündüz sığınacaq axtaran qurbağaları aldadan hədəf tələ kimi xidmət etdiyini təxmin edirik.


Yeni Zelandiya və Kvinslend pirat hörümçəklərinin (Araneae, Mimetidae) biologiyası: aqressiv mimika, araneofagiya və yırtıcı ixtisaslaşma

Mimet sp. indet. və Mimetus maculosus, müvafiq olaraq Yeni Zelandiya və Avstraliyadan laboratoriyada və təbiətdə tədqiq edilmişdir. Davranış baxımından bu iki növ çox oxşar idi. Hər birinin, ilk növbədə, yadplanetlilərin torlarını işğal edən, ov hörümçəyin öz ovuna normal reaksiya verdiyi kimi müxtəlif vibrasiyalı davranışlar edərək aqressiv mimika rolunu oynayan və yaxın məsafədən ağciyərlə hücuma məruz qalan araneofaq hörümçək olduğu aşkar edildi. Hörümçəyi onurğa ilə örtülmüş ayaqları ilə əmələ gələn "səbət"də saxlayaraq, güclü, yəqin hörümçəyə xas zəhərlə qurbanını ram edir. Təbiətdə bu mimetidlərin məhdud sayda hörümçəklərlə qidalandığı müşahidə edildi: kürə tor quran araneidlər və kosmik şəbəkə quran teridiidlər. Bəzən onlar başqa növ torları tuturdular, lakin laboratoriyada yalnız araneidləri və teridiidləri səmərəli şəkildə ələ keçirdilər. Onlar kribella olmayan amaurobiidləri əhəmiyyətli dərəcədə daha az səmərəli şəkildə ələ keçirdilər və heç vaxt digər hörümçək növlərini tutmadılar. Bəzən həşəratlarla qidalanan mimetidlər araneid və theridiid torlarında və theridiidlərin yumurtalarında tələyə düşürdülər. Eksperimental sübutlar göstərdi ki, bu mimetidlərin yırtıcı davranışında görmə az və ya heç əhəmiyyət kəsb etmir. Mimetidlərin davranışı ilə müqayisə edilir Portia, araneofagik şəbəkəyə nüfuz edən salisiddir və bu tədqiqatın nəticələri salisidin təkamülü ilə bağlı fərziyyələrlə bağlı müzakirə olunur.


Qərbi Avstraliyada invaziv qarışqaları təqdim etdi

İnvaziv qarışqa növləri məişət əşyaları, bitki qabları, zibillər, dəniz qabları və maşınlarda “avtostopla” bütün dünyada geniş yayılmışdır.

Argentina qarışqası və sahil qəhvəyi qarışqa (böyük başlı qarışqa) artıq WA-da ciddi şəhər zərərvericiləri kimi müəyyən edilmiş invaziv qarışqalar təqdim olunur. İctimaiyyət uşaq bağçalarından və dostlardan alınan bitki qablarının qarışqalardan azad olmasını təmin etməklə zərərverici qarışqaların yayılmasının qarşısını almağa kömək edə bilər.

Əsasən giriş limanları (hava və dəniz) vasitəsilə WA-nı dövlətlərarası və xaricdən təhdid edən qırmızı idxal edilən atəş qarışqası, gəzən qarışqa və elektrik qarışqası kimi başqaları da var. Hazırda Avstraliya və WA üçün ən çox narahatlıq doğuran invaziv qarışqa növləri aşağıdakı Cədvəl 1-də verilmişdir.


Qərbi Avstraliyada tapılan digər qarışqa növləri

Aşağıda bir sıra yerli və introduksiya edilmiş qarışqa növləri təsvir edilmişdir ki, bunlar həm ev təsərrüfatları, həm bizneslər, həm də kənd təsərrüfatı obyektləri üçün problem yarada bilər. Bu növ siyahısı identifikasiya üçün PaDIS-ə təqdim edilmiş qarışqa nümunələrinə əsaslanır. Bu, WA-dakı bütün qarışqa növlərinin əhatəli siyahısı deyil. Mövcud qarışqa məlumat vərəqlərimizə və ya veb səhifələrimizə daxil olmaq üçün cədvəldəki hər bir qarışqanın "hiperlinkli" ümumi adına klikləyin. Bu veb-səhifənin sağ tərəfindəki keçidlərə də baxın.

Ümumi ad

Elmi adı

Ümumi yerlər

Dişləmələr və ya dişləmələr?

Ochetellus glaber (vətəni Avstraliya)

Kollu torpaq və kolluq torpaq daxilində yaşayış blokları

Dişləməyin, amma dişləyə bilər

(yalnız yerli növlər, Dülgər qarışqaları deyil)

yerli və yerli olmayan növlər

Çöldə yerdə yuva qurun. Bağlarda, qazonlarda və yollarda qum qazın

Zərərsiz və sancmayın

Iridomyrmex chasei spp. (doğma WA)

Sanclamır, ancaq qaynayır və dişləyir

Yerli və introduksiya edilmiş növlər

Cədvəl 1 və 2 Avstraliya Hökumətinin cədvəlindən dəyişdirilmişdir.


Yeni hörümçək növü

Aşağı şəkil: Yeni kəşf edilmiş Ocrepeira klamt hörümçək növünün erkək nümunəsinin (yuxarı sıra) və dişi nümunəsinin (aşağı sıra) müxtəlif görünüşləri. Kredit: Charlotte Hopfe.

Doktorluq dərəcəsinin bir hissəsi olaraq Kolumbiyanın dağlıq ərazilərində apardığı tədqiqat zamanı Charlotte Hopfe, Ph.D. Bayreuth Universitetində Biomateriallar araşdırma qrupunda Prof. Dr. Thomas Scheibelin nəzarəti altında bir tələbə, yeni bir hörümçək növünü kəşf etdi və zooloji olaraq təsvir etdi. Əvvəllər naməlum olan araxnidlərin vətəni Sakit okean sahillərindən çox da uzaq olmayan, dəniz səviyyəsindən 3500 metrdən çox hündürlükdə yerləşən mərkəzi kordilleradadır. Jurnalda PLOS BİR, Bayreuth alimi Ocrepeira Klamt adlandırdığı hörümçəyi təqdim edir.

"Ocrepeira klamt zooloji adını orta məktəbdə alman dili müəllimim Ulrike Klamtın şərəfinə seçdim. Onun öz peşəsinə can atması, tələbələrinə və ədəbiyyata göstərdiyi maraq mənim üçün ilham mənbəyidir", - Charlotte Hopfe deyir. .

Kolumbiyadakı cordillera qeyri-adi geniş çeşidi ilə məşhurdur. Bu növlərin yaşayış yerləri çox fərqli iqlim şəraiti, bitki örtüyü və ekosistemləri olan yüksəkliklərdə yayılmışdır. Bayreuth tədqiqatçısı bu yaşayış yerlərində 100-dən çox hörümçək növünün nümunələrini toplayıb və zooloji cəhətdən müəyyən edib. Bununla o, əsasən 2016-cı ildə Kolumbiyada vətəndaş müharibəsi bitdikdən sonra yalnız tədqiqatçılar üçün əlçatan olan bir bölgədə idi.

O, yeni hörümçəyi dəniz səviyyəsindən 3500 metrdən çox hündürlükdə kəşf edib. Bu və bir çox digər hörümçək nümunələrinin müəyyən edilməsində Hopfe, Bayreuth Universitetinin tədqiqat əməkdaşlığının olduğu Kolumbiyanın Kali şəhərində yerləşən Universidad del Valle tədqiqatçılarından dəyərli dəstək aldı. Kolumbiya Bayreuth Universitetinin beynəlmiləlləşdirmə strategiyasında prioritet ölkə kimi müəyyən edilmişdir, buna görə də bir neçə Kolumbiyanın universiteti ilə sıx əlaqələr saxlayır.

Bu cür nəhəng iqlim və ekoloji müxtəlifliyə malik bölgələrdən olan hörümçəklərin tədqiqi iki hələ öyrənilməmiş suala cavab tapmaq şansı verə bilər. Hörümçəklərin təkamülünə temperaturun, yağıntının və ya digər iqlim amillərinin təsir edib-etmədiyi və ya onların ipəklərinin xüsusiyyətləri hələ məlum deyil. Məsələn, aran tropik meşələrində son dərəcə elastik ipəkli növlərin nisbəti yarımsəhradakından daha yüksəkdirmi? Bir hörümçək növünün istehsal etdiyi ipəyin xüsusiyyətlərinin iqlim faktorları tərəfindən dəyişdirilib-dəyişdirilmədiyi hələ də aydın deyil. Ocrepeira klamt kimi yüksək dağlarda yaşayan bir hörümçək, kordilyeranın daha aşağı bölgəsindən olsaydı, eyni ipəyi istehsal edərdimi? Bu sualların cavabı qeyri-adi hörümçək ipəklərinin inkişaf etdiyi şərtlərlə bağlı mühüm ipucu verə bilər.

Oxşar xətlərlə yanaşı, xassələrinə görə biotibb və biotexnologiyada müəyyən tətbiqlər üçün hazırda məlum olan ipək zülallarından daha uyğun olan hörümçək ipək zülallarının olub-olmadığını araşdırmaq da maraqlı olardı. "Strukturlarını və xassələrini bildiyimiz hörümçək ipəklərinin müxtəlifliyi nə qədər çox olarsa, mövcud biomaterialları optimallaşdırmaq və ipək zülalları əsasında yeni növ biomaterialları inkişaf etdirmək potensialı bir o qədər böyükdür", - Hopfe izah edir.


İçindəkilər

Ailə: Papilionidae (qaranquşquyruğu) — 18+2 növ [*2 qeyri-kontinental növ]

Papilioninae Redaktə edin

  • Dörd dirəkli qılınc quyruğu, Protographium leosthenes(Doubleday, 1846)[2] — şəkilli
  • Beş dırnaqlı və ya zəncirli qılınc quyruğu, Graphium aristeus(Stoll, 1780)[4]
  • Macliyin qılınc quyruğu, Graphium macleayanus(Liç, 1814)[5]
  • Mavi üçbucaq, Graphium sarpedonu(Linnaeus, 1758)[7] — şəkilli
  • Solğun üçbucaq, Graphium eurypylus(Linnaeus, 1758)[7]
  • Yaşıl üçbucaq, Graphium macfarlanei(Butler, 1877)[11]
  • Yaşıl xallı üçbucaq, Graphium agamemnon(Linnaeus, 1758)[7]
  • Zərif qaranquş quyruğu, Papilio anactus(W. S. Macleay, 1826)[12]
  • Bağça qaranquşu, Papilio aegeus(Donovan, 1805)[13] — şəkilli
  • Ambrax qaranquşu, Papilio ambrax(Boisduval, 1832)[15]
  • Qaranquş quyruğu, Papilio fuscus(Goeze, 1779)[16]
  • Ulysses qaranquşu, Papilio ulysses(Linnaeus, 1758)[7] — şəkilli
  • Damalı qaranquş quyruğu, Papilio demoleus(Linnaeus, 1758)[7]
  • *Milad qaranquşu, Papilio memnon(Linnaeus, 1758)[7] [*Milad adasının doğma yeri]
  • *Norfolk qaranquşu, Papilio amintor(Boisduval, 1859)[20] [*Norfolk adasının doğma yeri]
  • Qaranquş quyruğunu təmizləmək, Cressida cressida(Fabricius, 1775)[21]
  • Richmond quş qanadı, Ornithoptera richmondia(Boz, 1853)[22]
  • Cairns quş qanadı, Ornitoptera euphorion(Boz, 1853)[22] — şəkilli
  • Yeni Qvineya və ya adi yaşıl quş qanadı, Ornithoptera priamus(Linnaeus, 1758)[7]
  • Qırmızı gövdəli qaranquş quyruğu, Pachliopta polydorus(Linnaeus, 1763)[25]

ailə: Pieridae (ağ və sarı) — 35+2+1 növ [†1 introduksiya edilmiş növ]

Pierinae: ağlar Redaktə edin

  • Cənub inci-ağ, Elodina angulipennis(H. Lucas, 1852)[26]
  • Cape York mirvari ağ, Elodina claudia(de Baar & amp Hancock, 1993)[27]
  • Dar qanadlı mirvari ağ, Elodina padusa(Hewitson, 1853)[28]
  • Zolaqlı mirvari ağ, Elodina parthia(Hewitson, 1853)[28]
  • Zərif inci-ağ, Elodina perdita(Miskin, 1889)[29]
  • Parıldayan mirvari ağ, Elodina queenslandica(de Baar və Hancock, 1993)[27]
  • Kiçik inci-ağ, Elodina Uokeri(Batler, 1898)[30]
  • Qara xallı ağ, Leptoziya nina(Fabricius, 1793)[31] — sağ şəkil
  • narıncı albatros, Appias ad(Suxana və Lyell, 1914)[9]
  • Ağ və ya adi albatros, Appias albina(Boisduval, 1836)[32] — sağ şəkil
  • Mavi albatros, Appias celestina(Boisduval, 1832)[15]
  • Boz albatros, Appias melania(Fabricius, 1775)[21]
  • Sarı albatros, Appias paulina(Kramer, 1777)[4]
  • Zolaqlı albatros, Appias olferna(Swinhoe, 1890)[33]
  • †Kiçik ağ kələm, Pieris rapae(Linnaeus, 1758)[7] [†introduksiya edilmiş növlər] — sağ şəkil
  • Kapari ağ, Belenois javasağ şəkil
  • qağayı, Cepora perimale(Donovan, 1805)[13]
  • Ləkəli İzebel, Delias aganippe(Donovan, 1805)[13]
  • Skarlet İzebel, Delias argenthona(Fabricius, 1793)[31] — sağ şəkil
  • Qızıl İzebel, Delias aruna(Boisduval, 1832)[15]
  • Sarı zolaqlı İzebel, Delias ennia(Wallace, 1867)[35]
  • İmperator İzebel, Delias harpalyce(Donovan, 1805)[13]
  • Qırmızı zolaqlı İzebel, Delias mysis(Fabricius, 1775)[21] — sağ şəkil
  • Qara İzebel, Delias nigrina(Fabricius, 1775)[21]
  • Sarı xallı İzebel, Delias nysa(Fabricius, 1775)[21]

Coliadinae: sarılar Redaktə edin

  • Ağ miqrant, Catopsilia piranthe(Linnaeus, 1758)[7]
  • Limon miqrantı, Catopsilia pomona(Fabricius, 1775)[21] — sağ şəkil
  • Narıncı miqrant, Catopsilia scylla(Linnaeus, 1764)[7]
  • Sarı miqrant, Catopsilia gorgophone(Boisduval, 1836)[32]
  • Markasız ot-sarı, Eurema brigitta(Stoll, 1780)[4] — sağ şəkil
  • Astarlı ot-sarı, Eurema laeta(Boisduval, 1836)
  • Çəhrayı ot-sarı, Eurema herla(W. S. Macleay, 1826)[12]
  • Kiçik ot-sarı, Eurema gülümsəyir(Donovan, 1805)[13]
  • Geniş haşiyəli ot-sarı, Eurema puella(Boisduval, 1832)[15]
  • Qırmızı ot-sarı, Eurema alitha(C. & R. Felder, 1832)[41]
  • Böyük ot-sarı, Eurema hecabe(Linnaeus, 1758)[7] — sağ şəkil
  • *Üç ləkəli ot sarı, Eurema blanda(Boisduval, 1836)[32] [*Milad və Darnli adalarının doğma yeri]

ailə: Riodinidae (metal nişanları) — 1 növ

Nemeobiinae Redaktə edin

ailə: Lycaenidae (qossamer qanadlı mavilər və mislər) — 142+7 növ

Miletinae: kombaynlar Edit

Theclinae: hairstreaks Redaktə edin

  • Damalı mis, Lucia limbaria(Swainson, 1833)[47]
  • Parlaq mis, Paralucia aurifera(Blanchard, 1848)[48]
  • Odlu mis, Paralucia pyrodiscus(Doubleday, 1847)[23]
  • Bənövşəyi və ya Bathurst mis, Paralucia spinifera(Edvards və Common, 1978)[50] — sağ şəkil
  • Parlaq meşə-mavi, Pseudodipsas cephenes(Hewitson, 1874)[51]
  • Tünd meşə-mavi, Pseudodipsas eone(C. & R. Felder, 1865)[52]
  • Qara damarlı qarışqa-mavi, Acrodipsas arcana(Miller & amp Edwards, 1978)[53]
  • Qızıl qarışqa-mavi, Acrodipsas aurata(Qumlar, 1997)[54]
  • Tunc qarışqa-mavi, Acrodipsas brisbanensis(Miskin, 1884)[36]
  • Mis qarışqa-mavi, Acrodipsas cuprea(Qumlar, 1965)[55]
  • Decima qarışqa-mavi, Acrodipsas decimaMiller və Leyn, 2004
  • Qara qarışqa-mavi, Acrodipsas hirtipes(Qumlar, 1980)[56]
  • Mangrov və ya İllidge qarışqa mavisi, Acrodipsas illidgei(Suxana və Lyell, 1914)[9] — sağ şəkil
  • Boz qarışqa-mavi, Acrodipsas melania(Qumlar, 1980)[56] — sağ şəkil
  • Qəhvəyi qarışqa-mavi, Acrodipsas mortoni(Qumlar, Miller və Kerr, 1997)[57]
  • Kiçik qarışqa-mavi, Acrodipsas myrmecophila(Suxana və Lyell, 1913)[58]
  • Mis daş-qaş, Hipokrizop apelles(Fabricius, 1775)[21]
  • Apollon cəvahiratı, Hipokrizop apollon(Miskin, 1891)[59]
  • Sarı ləl-cəvahirat, Hipokrizoplar byzos(Boisduval, 1832)[15] — sağ şəkil
  • Möhtəşəm daş-qaş, Hipokrizop klonu(Grose-Smith, 1900)[61]
  • Siyan zərgəri, Hipokrizop siyan(Su evi və Lyell, 1914)[9]
  • Ay işığı zərgərlik, Hypochrysops delicia(Hewitson, 1875)[62]
  • İpək zərgərlik, Hypochrysops digglesii(Hewitson, 1874)[51]
  • Ametist daş, Hypochrysops elgneri(Suxana və Lyell, 1909)[64]
  • Manqrov ləl-cəvahiratı, Hipokrizop epikur(Miskin, 1876)[66] — sağ şəkil
  • Firuzəyi ləl-cəvahirat, Hypochrysops halyaetus(Hewitson, 1874)[51] — sağ şəkil
  • Cənnət cəvahiratı, Hipokrizop hippuris(Hewitson, 1874)[51]
  • Odlu cəvahirat, Hipokrizoplar alovlanır(Liç, 1814)[5]
  • Mərcan daş, Hipokrizop miskini(Su anbarı, 1903)[63]
  • Nərgiz ləl-cəvahiratı, Hipokrizop nərgiz(Fabricius, 1775)[21] — sağ şəkil
  • Bulloak zərgərlik, Hypochrysops piceata(Kerr, Macqueen & amp Sands, 1969)[70]
  • Kral zərgərlik, Hipokrizop polikleti(Linnaeus, 1758)[7]
  • Tovuz quşu ləl-cəvahiratı, Hypochrysops pythias(C. & R. Felder, 1865)[8]
  • Yaşıl zolaqlı daş-qaş, Hipokrizop teon(C. & R. Felder, 1865)[8]
  • Azur ay işığı, Philiris azule(Külək və Clench, 1947)[72]
  • Böyük ay şüası, Philiris diana(Su evi və Lyell, 1914)[9]
  • İkirəngli ay şüası, Philiris fulgens(Qroz, Smit və Kirbi, 1897)[73]
  • Bənövşəyi ay işığı, Philiris innotatus(Miskin, 1874)[74]
  • Mavi ay işığı, Philiris nitens(Grose-Smith, 1898)[75]
  • Safir ay şüası, Philiris sappheira(Qumlar, 1980)[56]
  • Ağ kənarlı ay şüası, Philiris ziska(Grose-Smith, 1898)[75]
  • Arhopala eupolis(Miskin, 1890)[76]
  • Parlaq palıd mavisi, Arhopala madytus(Fruhstorfer, 1914)[44]
  • Parıldayan palıd mavisi, Arhopala micale(Blanchard, 1848)[48]
  • Ağ palıd-mavi, Arhopala wildei(Miskin, 1891)[59]
  • Tünd bənövşəyi göy, Ogris abrota(Vestvud, 1851)[78]
  • Safir mavisi, Ogyris aenone(Su anbarı, 1902)[79]
  • saten mavisi, Ogyris amaryllis(Hewitson, 1862)[80]
  • Parlaq bənövşəyi göy, Ogyris barnardi(Miskin, 1890)[76]
  • Cənubi bənövşəyi göy, Ogyris genoveva(Hewitson, 1853)[28]
  • Qızılı göy, Ogris ianthis(Su anbarı, 1900)[81]
  • Böyük bürünc mavi, Ogyris idmo(Hewitson, 1862)[80]
  • Narıncı uclu göy, Ogyris iphis(Suxana və Lyell, 1914)[9]
  • Geniş haşiyəli mavi, Ogyris olane(Hewitson, 1862)[80]
  • İpək mavisi, Ogyris oroetes(Hewitson, 1862)[80]
  • Kiçik bürünc mavi, Ogyris otanes(C. & R. Felder, 1865)[8]
  • Arid bürünc mavi, Ogyris subterrestris(Field, 1999)[82]
  • Şimal bənövşəyi göy, Ogyris zosine(Hewitson, 1853)[28]
  • Daxili saç düzümü, Jalmenus aridus(Graham & amp Moulds, 1988)[83]
  • Firuzəyi saç düzümü, Jalmenus clementi(Druce, 1902)[84]
  • Zümrüd saç düzümü, Jalmenus daemeli(Semper, 1879)[85]
  • Şimal saç düzümü, Jalmenus eichhorni(Staudinger, 1888)[86]
  • İmperator saç düzümü, Jalmenus evagoras(Donovan, 1805)[13]
  • Ametist saç düzümü, Jalmenus icilius(Hewitson, 1865)[87]
  • Jalmenus eubulusMiskin, 1876[66]
  • Stencilled saç düzümü, Jalmenus ictinus(Hewitson, 1865)[87]
  • Müxtəlif saç düzümü, Jalmenus inous(Hewitson, 1865)[87]
  • Waterhouse'un saç düzümü, Jalmenus litochroa(Su anbarı, 1903)[63]
  • Makquenin saç düzümü, Jalmenus pseudictinus(Kerr və Macqueen, 1967)[89]
  • İpək saç düzümü, Pseudalmenus chlorinda(Blanchard, 1948)[48]
  • Orkide parıltısı, Hypolycaena danis(C. & R. Felder, 1865)[8]
  • Qara ləkəli flaş, Hypolycaena phorbas(Fabricius, 1793)[31]
  • Tünd zoğalı, Deudorix epijarbas(Moore, 1858)[91] — sağ şəkil
  • Parlaq zoğalı, Deudorix diovis(Hewitson, 1863)[92]
  • Narıncı loblu flaş, Deudorix epirus(C. Felder, 1860)[93]
  • Ağ ləkəli parıltı, Deudorix democles(Miskin, 1884)[36]
  • Şahzadə flaş, Deudorix gülümsəməsi(Hewitson, 1863)[92]
  • İndiqo flaş, Rapala varuna(Horsfield, 1829)[95] — sağ şəkil
  • Qılınc quyruğu, Bindahara fosidləri(Fabricius, 1793)[31]

Polyommatinae: blues Redaktə edin

  • Qələm-mavi parlayan, Candalides helenita(Semper, 1879)[85]
  • Trident qələm-mavi, Candalides marqarita(Semper, 1879)[85]
  • Şimal karandaş-mavi, Candalides gilberti(Su anbarı, 1903)[63]
  • Ümumi qələm-mavi, Candalides absimilis(C. Felder, 1862)[96]
  • Tünd qələm-mavi, Candalides consimilis(Suxana, 1942)[77]
  • Mis qələm-mavi, Candalides cyprotus(Olliff, 1886)[99]
  • Müxtəlif tünd mavi, Candalides hyacinthina(Semper, 1879)[85]
  • Əkiz tünd mavi, Candalides geminus(Edvards və Kerr, 1978)[103]
  • Kiçik tünd mavi, Candalides erinus(Fabricius, 1775)[21]
  • Ləkələnmiş tünd mavi, Candalides acasta(Cox, 1873)[104]
  • Ləkəli tünd mavi, Candalides delospila(Su anbarı, 1903)[63]
  • Sarı ləkəli mavi, Candalides xanthospilos(Hübner, 1817)[105]
  • Şüalanan mavi, Candalides heathi(Cox, 1873)[104]
  • Qızıl şüalı mavi, Candalides noelkeri(Braby və Duqlas, 2004)[107]
  • Tünd opal, Nesolycaena dərmanı(Miskin, 1891)[59]
  • atlaz opal, Nesolycaena albosericea(Braby, 1996)[108]
  • Ləkəli opal, Nesolycaena urumelia(Tindale, 1922)[109]
  • Kimberli opal gördü, Nesolycaena caesia(d'Apice və Miller, 1992)[110]
  • Tünd kirpikli-mavi, Anthene seltuttus(Röber, 1886)[111]
  • solğun kirpikli-mavi, Anthene lycaenoides(C. Felder, 1860)[93]
  • bənövşəyi xətt-mavi, Petrelaea tombugensis(Röber, 1886)[111]
  • Böyük bənövşəyi xətt-mavi, Nacaduba berenice(Herrich-Schäffer, 1869)[113]
  • Ağ zolaqlı xətt-mavi, Nacaduba kurava(Moore, 1858)[91]
  • İki xallı xətt-mavi, Nacaduba biocellata(C. & R. Felder, 1865)[8]
  • Yaşıl zolaqlı xətt-mavi, Nacaduba cyanea(Kramer, 1775)[4]
  • *Bənövşəyi xətt-mavi, Nacaduba calauria(C. Felder, 1860)[93] [*Doğma Dauan və Murray adaları]
  • *Qalın xətt-mavi, Nacaduba paktolusu(C. Felder, 1860)[93] [*Doğma Darnley və Murray Adaları]
  • Tüklü xətt-mavi, Erysichton lineata(Murrey, 1874)[114]
  • Mərmərli xətt-mavi, Erysichton palmira(C. Felder, 1860)[93]
  • Böyük yaşıl zolaqlı mavi, Danis danis(Kramer, 1775)[4]
  • * Tünd yaşıl zolaqlı mavi, Nothodanis schaeffera(Eschscholtz, 1821)[115] [*Mürrey adasının doğma yeri]
  • Kiçik yaşıl zolaqlı mavi, Psychonotis caelius(C. Felder, 1860)[93] — bunu soruş
  • Bənövşəyi xətt-mavi, Prosotas dubiosa(Semper, 1879)[85]
  • Qısa quyruqlu xətt-mavi, Prosotas felderi(Murrey, 1874)[114]
  • Uzun quyruqlu mavi xətt, Prosotas nora(Suxana və Lyell, 1914)[9]
  • *Gracile xətti-mavi, Prosotas gracilis(Röber, 1886)[111] [*Dauan adasının doğma yeri]
  • Papua xətti-mavi, Catopyrops ancyra(Suxana və Lyell, 1914)[9]
  • Xallı mavi xətt, Catopyrops florinda(Butler, 1877)[11]
  • Bürünc xətt-mavi, Ionolice helikonu(Su evi və Lyell, 1914)[9]
  • Acı kol mavisi, Theclinesthes albocincta(Su anbarı, 1903)[63]
  • Qərbi acı kol mavisi, Theclinesthes hesperia(Sibatani və Grund, 1978)[116]
  • Göy mavi, Theclinesthes miskini(T. P. Lukas, 1889)[117]
  • Cycad mavi, Theclinesthes onycha(Hewitson, 1865)[87]
  • Duzlu mavi, Theclinesthes serpentata(Herrich-Schäffer, 1869)[113]
  • Samfir mavi, Theclinesthes sulpitius(Miskin, 1890)[76]
  • Parlaq mavi xətt, Sahulana sintillata(T. P. Lukas, 1889)[117]
  • Saçaqlı göy-göy, Neolucia agricola(Vestvud, 1851)[78]
  • Montane-mavi, Neolucia hobartensis(Miskin, 1890)[76]
  • solğun göy, Neolucia mathewi(Miskin, 1890)[76]
  • Ağ zolaqlı cerulean, Jamides aleuas(C. & R. Felder, 1865)[8]
  • Parlaq qızılgül, Jamides amarauge(Druce, 1891)[71]
  • *Kral cerulean, Jamides bochus(Stoll, 1782)[4] [*Milad adasının doğma yeri]
  • * Papua cerulean, Jamides nemophila(Butler, 1876)[19] [*Darnli adasının doğma yeri]
  • solğun göyərti, Jamides cyta(Boisduval, 1832)[15]
  • Bənövşəyi zəncəfil, Jamides phaseli(Mathew, 1889)[120]
  • Kobalt noxud mavisi, Katochrysops amasea(Su evi və Lyell, 1914)[9]
  • solğun noxud mavisi, Katochrysops panormus(C. Felder, 1860)[93]
  • Uzun quyruqlu noxud mavisi, Lampides boeticus(Linnaeus, 1767)[122]
  • Plumbago mavi, Leptotlar plinius(Fabricius, 1793)[31]
  • Xallı ot-mavi, Zizeeria karsandra(Moore, 1865)[124]
  • Adi ot-mavi, Zizina labradus(Qodart, 1824)[125]
  • *Daha az ot-mavi, Zizina otis(Fabricius, 1787)[126] [*Milad adasının doğma yeri]
  • Zərif ot-mavi, Zizula hylax(Fabricius, 1775)[21]
  • Narıncı uclu noxud mavisi, Everes lakturnus(Qodart, 1824)[125]
  • Göy mavi, Pithecops dionisius(Boisduval, 1832)[15]
  • Şeytan mavisi, Neopithecops lucifer(Röber, 1886)[111]
  • Kiçik çəhrayı mavi, Megisba strongyle(C. Felder, 1860)[93]
  • Zərif mavi, Udara tenella(Miskin, 1891)[59]
  • Ləkəli noxud mavisi, Euchrysops cnejus(Fabricius, 1798)[130]
  • Zərgərli ot-mavi, Freyeria putli(Kollar, 1844)[131]

ailə: Nymphalidae (fırçalı və ya dördayaqlı) — 81+6 növ

Morphinae Edit

  • mirvari bayquş, Taenaris artemis(Snellen van Vollenhoven, 1860)[132]
  • *İpək bayquş, Taenaris catops(Westwood, 1851)[78] [*Saibai və Darnley adalarının doğma yeri]

Satyrinae Redaktə edin

  • Axşam qəhvəyi, Melanit səbəb olur(Linnaeus, 1758)[7] — sağ şəkil
  • *Bantlı axşam qəhvəyi, Melanit amabilis(Boisduval, 1832)[15] [*Darnli adasının doğma yeri]
  • *Papua axşam qəhvəyi, Melanit davamlılığı(Kramer, 1777)[4] [*Mürrey adasının doğma yeri]
  • xurma milçəyi, Elymnias agondas(Boisduval, 1832)[15]
  • Tünd kol-qəhvəyi, Orsotriaena medus(Fabricius, 1775)[21] — sağ şəkil
  • Pis kol-qəhvəyi, Mycalesis perseus(Fabricius, 1775)[21] — sağ şəkil
  • Sidr kolu-qəhvəyi, Mycalesis sirius(Fabricius, 1775)[21]
  • Narıncı kol-qəhvəyi, Mikalez son(Fabricius, 1775)[21]
  • Qaranlıq cəngavər, Ypthima arctoa(Fabricius, 1775)[21]
  • Hypocysta adiante(Hübner, 1831)[134]
  • Hiposista evfemiya(Westwood, 1851)[78]
  • Hypocysta irius(Fabricius, 1775)[21]
  • Hypocysta metirius(Butler, 1875)[135]
  • Hypocysta psevdirius(Butler, 1875)[135]
  • Tasmaniya ksenika, Nesoxenica leprea(Hewitson, 1864)[136]
  • Argynnina cyrila(Suxana və Lyell, 1914)[9]
  • Argynnina hobartia(Westwood, 1851)[78]
  • Oreixenica correae(Olliff, 1890)[137]
  • Oreixenica Kershawi(Miskin, 1876)[66]
  • Oreixenica lathoniella(Westwood, 1851)[78]
  • Oreixenica latialis(Suxana və Lyell, 1914)[9]
  • Oreixenica orichora(Meyrik, 1885)[138]
  • Oreixenica ptunarra(Couchman, 1953)[139]
  • Üzüklü ksenika, Geitoneura acantha(Donovan, 1805)[13] — sağ şəkil
  • Mərmər ksenika, Geitoneura klugii(Guérin-Méneville, 1830)[14] — sağ şəkil
  • Geitoneura minyas(Suxana və Lyell, 1914)[9]
  • Bankların qəhvəyi, Heteronimfa banksii(Liç, 1814)[5] — sağ şəkil
  • Heteronimfa kordace(Geyer, 1832)[140]
  • Heteronimfa merope(Fabricius, 1775)[21]
  • Heteronimfa mirifica(Butler, 1866)[141]
  • Heteronimfa paradelfa(Aşağı, 1893)[142]
  • Heteronimfa penelope(Suxana, 1937)[143]
  • Heteronimfa solandri(Su anbarı, 1904)[144]
  • Tisiphone abeona(Donovan, 1805)[13]
  • Tisiphone helena(Olliff, 1888)[145]

Charaxinae: yarpaq qanadları Redaktə edin

  • Narıncı imperator, Charaxes latona(Butler, 1865)[146]
  • Quyruqlu imperator, Polyura sempronius(Fabricius, 1793)[31] — sağ şəkil
  • * Milad imperatoru, Polyura andrewsi(Butler, 1900)[147] [*Milad adasının doğma yeri]

Apaturinae Redaktə edin

Heliconiinae: longwings Redaktə edin

  • Şüşəçilik, Akrea andromacha(Fabricius, 1775)[21]
  • Qırmızı krujeva, Cethosia cydippe(Linnaeus, 1758)[7]
  • Narıncı krujeva, Cethosia penthesilea(Kramer, 1777)[4]
  • kreyser, Vindula arsinoe(Kramer, 1777)[4] — sağ şəkil
  • Sərhədli rustik, Cupha prosop(Fabricius, 1775)[21]
  • Quyruqlu rustik, Vagrans egista(Kramer, 1780)[4]
  • Ləkəli rustik, Phalanta phalanta(Druri, 1773)[9] — sağ şəkil
  • Bağlanmış fritillary, Argynnis hyperbius(Linnaeus, 1763)sağ şəkil

Nymphalinae Edit

  • yarpaqlı, Doleschallia bisaltide(Kramer, 1777)[4] — sağ şəkil
  • Mavi zolaqlı yumurta milçəyi, Hypolimnas alimena(Linnaeus, 1758)[7]
  • Qarğa yumurta milçəyi, Hypolimnas anomaliyası(Wallace, 1869)[154]
  • *Xallı qarğa yumurta milçəyi, Hypolimnas antilopu(Kramer, 1777)[4] [*Mürrey və York adalarının doğma yeri]
  • Müxtəlif yumurta milçəyi, Hypolimnas bolina(Linnaeus, 1758)[7]
  • Danaid yumurta milçəyi, Hypolimnas misippus(Linnaeus, 1764)[155] — sağ şəkil
  • Şimal arqusu, Junonia erigon(Kramer, 1775)[4]
  • Boyalı xanım, Vanessa Cardui(Linnaeus, 1758)[7]
  • Sarı admiral, Vanessa itea(Fabricius, 1775)[21]
  • Avstraliyalı boyalı xanım, Vanessa Kershawi(McCoy, 1868)[157] — sağ şəkil
  • İzebel pərisi, Mynes Geoffroyi(Guérin-Méneville, 1830)[14]

Biblidinae Redaktə edin

  • Narıncı təyyarə, Pantoporia consimilis(Boisduval, 1832)[15]
  • Qara gözlü təyyarə, Pantoporia venilia(Linnaeus, 1758)[7]
  • Sarı gözlü təyyarə, Neptis praslini(Boisduval, 1832)[15]
  • Ağ zolaqlı təyyarə, Phaedyma shepherdi(Moore, 1858)[91] — sağ şəkil
  • Narıncı zolaqlı təyyarə, Lexias aeropa(Linnaeus, 1758)[7]

Libytheinae Redaktə edin

Danainae: südlü kəpənəklər Edit

  • Mavi pələng, Tirumala hamata(W. S. Macleay, 1826)[12]
  • Bataqlıq pələngi, Danaus affinis(Fabricius, 1775)[21] — sağ şəkil
  • Narıncı pələng, Danaus genutia(Kramer, 1779)[4]
  • Monarx və ya sərgərdan, Danaus pleksipus(Linnaeus, 1758)[7] — sağ şəkil
  • Kiçik sərgərdan, Danaus chrysippus(Linnaeus, 1758)[7]
  • Markasız qarğa, Euploea alcathoe(Qodart, 1819)[156]
  • Adi qarğa, Euploea nüvəsi(Kramer, 1780)[4] — sağ şəkil
  • Qəmli qarğa, Euploea yosunları(Qodart, 1819)[156]
  • Bates qarğası, Euploea batesii(C. & R. Felder, 1865)[8]
  • Climena qarğası, Euploea climena(Stoll, 1782)[4]
  • Kiçik qəhvəyi qarğa, Euploea darchia(W. S. Macleay, 1826)[12]
  • Narıncı rəngli qarğa, Euploea leucostictos(Gmelin, 1790)[168]
  • İki markalı qarğa, Euploea sylvester(Fabricius, 1793)[31] — sağ şəkil
  • Bənövşəyi qarğa, Euploea tulliolus(Fabricius, 1793)[31] — sağ şəkil
  • *Geniş markalı qarğa, Euploea netscheri(Snellen, 1889)[169] [*Dauan adasının doğma yeri]
  • Hamadryad, Tellervo zoilus(Fabricius, 1775)[21]

ailə: Hesperiidae (skippers) [170] - 121+1 növ

Pyrginae: yayılmış qanadlı skippers Edit

  • Bəzəkli alacakaranlıq düz, Chaetocneme denitza(Hewitson, 1867)[40]
  • Şərq alacakaranlığı, Chaetocneme beata(Hewitson, 1867)[40]
  • Bantlı alacakaranlıq düz, Chaetocneme critomedia(Guérin-Méneville, 1831)[172]
  • Bənövşəyi alacakaranlıq düz, Chaetocneme porphyropis(Meyrick & Lower, 1902)[173]
  • Regent kapiper, Euschemon rafflesia(W. S. Macleay, 1826)[12] — sağ şəkil
  • Qərb mənzili, Exometoeca nycteris(Meyrik, 1888)[175]
  • Tunc düz, Netrocoryne repanda(C. & R. Felder, 1867)[152]
  • Alçalı düz, Tagiades japetus(Stoll, 1781)[4]
  • *Papua qar düzü, Tagiades nestus(C. Felder, 1860)[93]

Coeliadinae: awls, awlets və polislər Edit

  • tovuz quşu, Allora doleschallii(C. Felder, 1860)[93]
  • Böyük tovuz quşu, Allora mayor(Rotşild, 1915)[178]
  • Dar qanadlı və ya qəhvəyi bayraq, Badamia nidasıdır(Fabricius, 1775)[21]
  • Yaşıl kürəkən, Hasora rəngsizliyi(C. & R. Felder, 1859)[179]
  • Ümumi zolaqlı ox, Hasora xromu(Kramer, 1780)[4]
  • Böyük zolaqlı büz, Hasora xoda(Mabille, 1876)[181]
  • enli zolaqlı büst, Hasora hurama(Butler, 1870)[177]

Trapezitinae: Avstraliya skippers Edit

  • Mavi flaş skipper, Rachelia extrusus(C. & R. Felder, 1867)[152]
  • İki xallı ot kapitanı, Pasma tasmanicus(Miskin, 1889)[29]
  • Qapalı kapitan, Dispar kompakt(Butler, 1882)[183]
  • Herimosa albovenata(Su anbarı, 1903)[63]
  • Anisyntoides argenteoornatus(Hewitson, 1868)[184]
  • Proeidosa polisema(Aşağı, 1908)[185]
  • Pseudoborbo bevani(Moore, 1878)[186]
  • Antipodia atralba(Tepper, 1882)[101]
  • Antipodia xaostola(Meyrik, 1888)[175]
  • Antipodia dactyliota(Meyrik, 1888)[175]
  • Croitana aestiva(Edvards, 1979)[187]
  • Croitana arenaria(Edvards, 1979)[187]
  • Croitana croites(Hewitson, 1874)[51]
  • Ağ damarlı qum gəmisi, Anisynta albovenata(Suxana, 1940)[190]
  • Xallı ot kapitanı, Anisynta cynone(Hewitson, 1874)[51]
  • İki markalı ot skipper, Anisynta dominula(Plötz, 1884)[191]
  • Montan çəmən və ya dağ kapitanı, Anisynta monticolae(Olliff, 1890)[137]
  • paz ot-skipper, Anisynta sfenosema(Meyrick & Lower, 1902)[173]
  • Dama-çəmən, Anisynta tillyardi(Suxana və Lyell, 1912)[192]
  • Hesperilla chrysotricha(Meyrick & Lower, 1902)[173]
  • Hesperilla crypsargyra(Meyrik, 1888)[175]
  • Hesperilla kriptoqramması(Meyrick & Lower, 1902)[173]
  • Hesperilla donnysa(Hewitson, 1868)[184]
  • Hesperilla flavescens(Su anbarı, 1903)[63]
  • Hesperilla furva(Qumlar və Kerr, 1973)[193]
  • Hesperilla idothea(Miskin, 1889)[29]
  • Hesperilla malindeva(Aşağı, 1911)[189]
  • Hesperilla mastersi(Su anbarı, 1903)[63]
  • Hesperilla ornata(Liç, 1814)[5]
  • Hesperilla picta(Liç, 1814)[5]
  • Hesperilla sarnia(Atkins, 1978)[194]
  • Hesperilla sexguttata(Herrich-Schäffer, 1869)[113]
  • Mesodina aeluropis(Meyrik, 1901)[195]
  • Mesodina cyanophracta(Aşağı, 1911)[189]
  • Mesodina gracillima(Edvards, 1987)[196]
  • Mesodina halyzia(Hewitson, 1868)[184]
  • Mesodina hayi(Edvards və A. J. Graham, 1995)[197]
  • Motasingha dirphia(Hewitson, 1868)[184]
  • Motasingha trimaculata(Tepper, 1882)[101]
  • Neohesperilla croceus(Miskin, 1889)[29]
  • Neohesperilla senta(Miskin, 1891)[59]
  • Neohesperilla ksantomera(Meyrick & Lower, 1902)[198]
  • Neohesperilla xiphiphora(Aşağı, 1911)[189]
  • Oreisplanus munionga(Olliff, 1890)[137]
  • Oreisplanus perornata(Kirby, 1893)[199]
  • Signeta flammeata(Butler, 1882)[183]
  • Signeta tymbophora(Meyrick & Lower, 1902)[173]
  • Toksidiya andersoni(Kirby, 1893)[199]
  • Toksidiyanın ikili günü(C. Felder, 1862)[96]
  • Toxidiya inrnatus(Batler, 1883)[200]
  • Melaniya toksiyası(Su anbarı, 1903)[63]
  • Toxidia parvulus(Plötz, 1884)[191]
  • Peron toksikozu(Latreille, 1809)[170]
  • Toksidiya rietmanni(Semper, 1879)[85]
  • Toksidiya tirrhus(Mabille, 1891)[201]
  • Gümüş xallı oxra, Argenteoornatus trapezitləri(Hewitson, 1868)[184]
  • Xallı oxra, Trapezitlər(A. A. E. Williams, M. R. Williams və R. W. Hay, 1998)[202]
  • Portağal oxra, Trapezit eliena(Hewitson, 1868)[184]
  • Bəzəkli oxra, Trapezit genevieveae(Atkins, 1997)[203]
  • Kiçik portağal oxra, Heteromakula trapeziti(Meyrick & Lower, 1902)[173]
  • Gümüş xırdalanmış oxra, Trapezit iacchoides(Su anbarı, 1903)[63]
  • Qəhvəyi oxra, Trapezites iacchus(Fabricius, 1775)[21]
  • Yellow ochre, Trapezites lutea(Tepper, 1882)[101]
  • Bronze ochre, Trapezites macqueeni(Kerr & Sands, 1970)[204]
  • Northern silver ochre, Trapezites maheta(Hewitson, 1877)[205]
  • Black-ringed ochre, Trapezites petalia(Hewitson, 1868)[184]
  • Heath ochre, Trapezites phigalia(Hewitson, 1868)[184]
  • Montane ochre, Trapezites phigalioides(Waterhouse, 1903)[63]
  • Southern silver ochre, Trapezites praxedus(Plötz, 1884)[191]
  • Sciron ochre, Trapezites sciron(Waterhouse & Lyell, 1914)[9]
  • Splendid ochre, Trapezites symmomus(Hübner, 1823)[206]
  • Sandstone ochre, Trapezites taori(Atkins, 1997)[203]
  • Laterite ochre, Trapezites waterhouse(Mayo & Atkins, 1992)[207]

Hesperinae: grass skippers Edit

  • Mimene atropatene(Fruhstorfer, 1911)[180]
  • Notocrypta waigensis(Plötz, 1882)[208]
  • Taractrocera anisomorpha(Lower, 1911)[189]
  • Taractrocera dolon(Plötz, 1884)[191]
  • Taractrocera ilia(Waterhouse, 1903)[63]
  • Taractrocera ina(Waterhouse, 1903)[63]
  • Taractrocera papyria(Boisduval, 1832)[15]
  • Ocybadistes ardea(Bethune-Baker, 1906)[209]
  • Ocybadistes flavovittata(Latreille, 1824)[210]
  • Ocybadistes hypomeloma(Lower, 1911)[189]
  • Ocybadistes knightorum(Lambkin & Donaldson, 1994)[211]
  • Ocybadistes walkeri(Heron, 1894)[212]
  • Suniana lascivia(Rosenstock, 1885)[213]
  • Suniana sunias(C. Felder, 1860)[93]
  • Arrhenes dschilus(Plötz, 1885)[214]
  • Arrhenes marnas(C. Felder, 1860)[93]
  • Telicota ancilla(Herrich-Schäffer, 1869)[113]
  • Telicota anisodesma(Lower, 1911)[189]
  • Telicota augias(Linnaeus, 1763)[25]
  • Telicota brachydesma(Lower, 1908)[185]
  • Telicota colon(Fabricius, 1775)[21]
  • Telicota eurotas(C. Felder, 1860)[93]
  • Telicota eurychlora(Lower, 1908)[185]
  • Telicota mesoptis(Lower, 1911)[189]
  • Telicota ohara(Plötz, 1883)[215]
  • Cephrenes augiades(C. Felder, 1860)[93]
  • Cephrenes trichopepla(Lower, 1908)[185]
  • Sabera caesina(Hewitson, 1886)[216]
  • Sabera dobboe(Plötz, 1883)[215]
  • Sabera fuliginosa(Miskin, 1889)[29]
  • Pelopidas agna(Evans, 1866)[217]
  • Pelopidas lyelli(Rothschild, 1915)[178]
  • Parnara amalia(Semper, 1879)[85]
  • Parnara bada(Waterhouse, 1903)[63]
  • Rice swift, Borbo cinnara(Wallace, 1866)[218]
  • Borbo impar(Mabille, 1883)[219]

Australia has 8,222 islands within her maritime borders. This is small in comparison with her northern neighbour Indonesia, with about 18,300 islands (high geological activity is constantly adding and removing Indonesian islands). The British Isles include more than 6,000 islands over a much smaller area. The Greek islands include about as many islands depending on the minimum size to take into account, but in an even smaller area.


İçindəkilər

Section Rhizosperma Redaktə et

Section Azolla Redaktə et

At least six extinct species are known from the fossil record:

  • Azolla intertrappeaSahni & H.S. Rao, 1934 (Eocene, India) [8]
  • Azolla berryiBrown, 1934 (Eocene, Green River Formation, Wyoming) [8]
  • Azolla priscaChandler & Reid, 1926 (Oligocene, London Clay, Isle of Wight) [8]
  • Azolla tertiariaBerry, 1927 (Pliocene, Esmeralda Formation, Nevada) [8]
  • Azolla primaeva(Penhallow) Arnold, 1955 (Eocene, Allenby Formation, British Columbia) [8]
  • Azolla boliviensisVajda & McLoughlin, 2005 (Maastrichtian - Paleocene, Eslaboacuten Formation and Flora FormationBolivia) [9]

Azolla is a highly productive plant. It doubles its biomass in 1.9 days or more, [10] depending on conditions, and yield can reach 8–10 tonnes fresh matter/ha in Asian rice fields. 37.8 t fresh weight/ha (2.78 t DM/ha dry weight) has been reported for Azolla pinnata in India (Hasan et al., 2009). [11]

Azolla floats on the surface of water by means of numerous small, closely overlapping scale-like leaves, with their roots hanging in the water. They form a symbiotic relationship with the cyanobacterium Anabaena azollae, which fixes atmospheric nitrogen. The plant can readily colonise areas of freshwater, and grow at great speed - doubling its biomass every two to three days. The typical limiting factor on its growth is phosphorus. An abundance of phosphorus, due for example to eutrophication or chemical runoff, often leads to Azolla blooms. Unlike all other known plants, its symbiotic microorganism transfers directly from one generation to the next. A, azollae is completely dependent on its host, as several of its genes have either been lost or transferred to the nucleus in Azolla's cells. [12]

The nitrogen-fixing capability of Azolla has led to widespread use as a biofertiliser, especially in parts of southeast Asia. The plant has been used to bolster agricultural productivity in China for over a thousand years. When rice paddies are flooded in the spring, they can be planted with Azolla, which then quickly multiplies to cover the water, suppressing weeds. The rotting plant material releases nitrogen into the water for the rice plants, providing up to nine tonnes of protein per hectare per year. [13]

Azolla are weeds in many parts of the world, entirely covering some bodies of water. The myth that no mosquito can penetrate the coating of fern to lay its eggs in the water gives the plant its common name "mosquito fern", [14] and may deter the survival of some of the larvae.

Most species can produce large amounts of deoxyanthocyanins in response to various stresses, [15] including bright sunlight and extreme temperatures, [16] [17] causing the water surface to appear to be covered with an intensely red carpet. Herbivore feeding induces accumulation of deoxyanthocyanins and leads to a reduction in the proportion of polyunsaturated fatty acids in the fronds, thus lowering their palatability and nutritive value. [18]

Azolla cannot survive winters with prolonged freezing, so is often grown as an ornamental plant at high latitudes where it cannot establish itself firmly enough to become a weed. It is not tolerant of salinity normal plants cannot survive in greater than 1–1.6‰, and even conditioned organisms die given salinity above 5.5‰. [19]

Azolla filiculoides Redaktə et

Azolla filiculoides (red azolla) is the only member of this genus and of the family Azollaceae in Tasmania. It is a common native aquatic plant in Tasmania. It is common behind farm dams and other still waterbodies. The plants are small (usually only a few cm across) and float, but can be abundant and form large mats. The plants are typically red, and have small, water repellent leaves.

Azolla reproduces sexually, and asexually (by splitting).

Like all ferns, sexual reproduction leads to spore formation, but unilke other members of this group Azolla produces two kinds. During the summer months, numerous spherical structures called sporocarps form on the undersides of the branches. The male sporocarp is greenish or reddish and looks like the egg mass of an insect or spider. It is two millimeters in diameter, and bears numerous male sporangia. Male spores (microspores) are extremely small and are produced inside each microsporangium. Microspores tend to adhere in clumps called massulae. [8]

Female sporocarps are much smaller, containing one sporangium and one functional spore. Since an individual female spore is considerably larger than a male spore, it is termed a megaspore.

Azolla has microscopic male and female gametophytes that develop inside the male and female spores. The female gametophyte protrudes from the megaspore and bears a small number of archegonia, each containing a single egg. The microspore forms a male gametophyte with a single antheridium which produces eight swimming sperm. [21] The barbed glochidia on the male spore clusters cause them to cling to the female megaspores, thus facilitating fertilization.

Food and animal feed Edit

In addition to its traditional cultivation as a bio-fertilizer for wetland paddy, Azolla is finding increasing use for sustainable production of livestock feed. [22] Azolla is rich in protein, essential amino acids, vitamins and minerals. Studies describe feeding Azolla to dairy cattle, pigs, ducks, and chickens, with reported increases in milk production, weight of broiler chickens and egg production of layers, as compared to conventional feed. One FAO study describes how Azolla integrates into a tropical biomass agricultural system, reducing the need for inputs. [23] Concerns about biomagnification exist because the plant may contain the neurotoxin BMAA that remains present in the bodies of animals consuming it and BMAA has been documented as passing along the food chain. [24] Azolla may contain this substance that is a possible cause of neurodegenerative diseases. [25] [26] [27] Azolla has been suggested as a foodstuff for human consumption, however, no long-term studies of the safety of eating Azolla have been made on humans. [28] Previous studies attributed neurotoxin production to Anabaena flos-aquae species, which is also a type of nitrogen-fixing cyanobacteria. [29] Further research may be needed to ascertain if A. azollae produces neurotoxins.

Companion plant Edit

Azolla has been used for at least one thousand years in rice paddies as a companion plant, to fix nitrogen and to block out light to prevent competition from other plants. Rice is planted when tall enough to poke through the Azolla layer. Mats of mature Azolla can also be used as a weed-suppressing mulch.

Rice farmers used Azolla as a rice biofertilizer 1500 years ago. The earliest known written record of this practice is in a book written by Jia Ssu Hsieh (Jia Si Xue) in 540 A.D on The Art of Feeding the People (Chih Min Tao Shu). By the end of the Ming dynasty in the early 17th century, Azolla’s use as a green compost was documented in local records. [30]

Larvicide Edit

The myth that no mosquito can penetrate the coating of fern to lay its eggs in the water gives the plant its common name "mosquito fern". [14] Azolla have been used to control mosquito larvae in rice fields. The plant grows in a thick mat on the surface of the water, making it more difficult for the larvae to reach the surface to breathe, effectively choking the larvae. [31]

This fern has been introduced to other parts of the world, including the United Kingdom, where it became a pest in some areas. A nominally tropical plant, it has adapted to the colder climate. It can form mats up to 30cm thick and cover 100% of a water surface, preventing local insects and amphibians from reaching the surface. [32]

A study of Arctic paleoclimatology reported that Azolla may have had a significant role in reversing an increase in greenhouse effect that occurred 55 million years ago that had caused the region around the north pole to turn into a hot, tropical environment. This research was conducted by the Institute of Environmental Biology at Utrecht University. It indicates that massive patches of Azolla growing on the (then) freshwater surface of the Arctic Ocean consumed enough carbon dioxide from the atmosphere for the global greenhouse effect to decline, eventually causing the formation of Ice sheets in Antarctica and the current "icehouse period". This theory has been termed the Azolla event.

Azolla can remove chromium, nickel, copper, zinc, and lead from effluent. It can also remove lead from solutions containing 1–1000 ppm. [33]


Nəticələr

Spider density, energy flux, and diversity

Despite a lower number of sampled species and individuals, the density of HE spiders was one order of magnitude higher than the density of LS spiders (Fig. 1 Appendix S2). Spider density and energy flux per unit area for spiders collected by both HE and LS were generally reduced in plantations as compared to rainforest and this was most prominent in oil palm monoculture (Fig. 1 Appendix S1: Table S10). The reduction was much more pronounced for the density of HE spiders, which decreased by 90% from rainforest to oil palm monoculture. Compared to rainforest (112 ± 59 kg·ha −1 ·yr −1 ), energy flux in the spider community collected by HE was reduced in jungle rubber by 72%, in rubber monoculture by 55%, and in oil palm monoculture by 94%. Energy flux in LS spiders was 20 ± 7 kg·ha −1 ·yr −1 in rainforest and was reduced by 57% only in oil palm monoculture. In contrast to HE spiders, energy flux in the LS spider communities was similar in rainforest, jungle rubber, and rubber, whereas density was reduced by 30% and 55% in rubber and oil palm monocultures, respectively, as compared to rainforest (Fig. 1 Appendix S1: Table S10).

Spider species richness and functional diversity per plot were significantly reduced in oil palm monoculture as compared to rainforest. The loss in species richness, rarefied richness, and FD per unit area in HE spiders was about 75–80% in jungle rubber and rubber monoculture, and about 91–98% in oil palm monoculture. The loss in these parameters in LS spiders was small in jungle rubber and rubber monoculture, but was 57–63% in oil palm monoculture (Fig. 2 Appendix S1: Table S10). The overall loss in species richness when both sampling methods were combined comprised about 30% in jungle rubber and rubber monoculture and 67% in oil palm monoculture as compared to rainforest. Corresponding losses in FD were slightly less pronounced (20% and 60%, respectively Fig. 2). Functional redundancy (estimated as the ratio between species richness and FD) was similar in HE spiders and in LS spiders in rainforest (1.76 ± 0.33 and 1.68 ± 0.32, respectively). Species richness and FD were intercorrelated across land-use systems, but the slope was steeper in plantation systems, suggesting lower functional redundancy when compared to rainforest communities. This was consistent in spider communities collected by HE, LS, and both methods combined (Fig. 2).

All studied parameters of vegetation and soil except for understory density, pH and earthworm density were negatively affected by the land-use change from rainforest to monocultures. Understory density was five times higher in oil palm monoculture than in rainforest, while pH and earthworm abundance were increased by 29% and 67%, respectively (Fig. 1 Appendix S1: Table S10).

The most parsimonious model explaining variation in abundance, species richness, and FD for both HE and LS spiders included only principle components of habitat structure. In all cases, these spider community parameters were negatively related to PC1 (i.e., a positive effect of the amount of litter, tree density, and understory height) and to PC3 (i.e., a positive effect of the amount of litter, but a negative effect of tree density), but were positively related to PC2 (i.e., a positive effect of understory density and height). The effects were similar in magnitude, but the effect of PC1 was more statistically clear (lower P values) in the majority of cases. The effect of PC4 was weak and not significant. Abundance of HE spiders was also negatively affected by earthworm abundance, although this effect was small. In contrast to abundance and diversity, predation (energy flux) of HE and LS spiders was better explained by PC1 of plant diversity (a positive effect of tree and understory species richness), but the effect was not significant for LS spiders (Appendix S1: Tables S8, S9).

Turnover and loss of species and traits

Dissimilarity of species among land-use systems (71% for HE, 82% for LS, and 78% for HE and LS combined) was higher than dissimilarity of trait combinations (64% for HE, 60% for LS, and 57% for HE and LS combined). For LS spiders and the combined data set, the turnover component of dissimilarity was higher for species (79% and 74%, respectively) than for trait combinations (54% and 49%, respectively). By contrast, these community attributes were more similar for HE spiders (52% for species and 48% for traits). The nestedness component of dissimilarity in LS spiders and combined data set overall was small, but higher for trait combinations than for species. Nestedness in HE spiders was 19% for species and 15% for trait combinations (Fig. 3).

Species and functional trait loss occurred at similar rates in HE spider communities (Fig. 3b). In oil palm plantations, no rainforest species and functional trait combinations were found and they were barely replaced by new species/combinations. In LS spider communities, species loss was significantly stronger than functional trait loss in rubber and oil palm monoculture ( χ 3 2 = 14.8, P = 0.0020 Appendix S1: Table S11 Fig. 3c). Despite very few rainforest species appearing in plantations, the loss of functional trait combinations was less pronounced due to other colonizing species with similar functional trait combinations.

Species composition in the combined HE and LS data set differed clearly between more natural (rainforest and jungle rubber) and more intensified systems (rubber and oil palm monocultures anosim R = 0.42, P < 0.001). The difference in taxonomic composition was visible at the level of families (see Appendix S4: Fig. S1) and clearly pronounced at the level of species (Fig. 4a) 26 species were found only in rainforest, while 82 species were found only in plantation systems. Most of the measured environmental factors contributed to distinction between rainforest/jungle rubber and monocultures, while differences within these groups were not related to measured factors (Fig. 4a).

Trait composition differed much less than species composition among land-use systems (anosim R = 0.17, P = 0.015). Monocultures were characterized by a higher number of generalists, species with patterned coloration, and cob-web building species, while rainforest was characterized by species of small size, orb-web builders, species covered with scutum, and species living in cryptic habitats (Appendix S4: Table S1). Difference in trait composition was related primarily to the amount of litter, understory density and height, and pH (Fig. 4b).


Landscapes and wildlife

Some parts of the Territory are very important for wildlife as they have an unusual richness of species, or particular groups of endemic or threatened species. Many of these areas are sites of conservation significance in the NT.

The most important area is the stone country of western Arnhem Land, which is home to far more endemic and threatened plants and animals than anywhere else in the Territory.

This is because it is split into deep gorges, caves, escarpments and bouldered slopes.

This provides protection from predators, fire and climatic change.

The area supports many relict species that are either entirely restricted to this area, or have very small numbers and distributions. Many of these relict species are hangovers from periods of far warmer or wetter climates.

Some of the ranges in Central Australia support large numbers of restricted and endemic species. Palm Valley is one such place.

Other parts of the Territory are important because they support abundances of wildlife.

The lowlands and floodplains of northern Australia support large groups of waterfowl, dense populations of fish and crocodiles, and many other species.

At Fogg Dam the population of water pythons has the greatest biomass density for any terrestrial predator system in the world.

Their main prey item, the dusky rat, is in the order of 15,000 individuals per square kilometre.

In other parts of the NT massive groups of wildlife are not a permanent feature.

The long-haired rat plagues in the Mitchell grasslands and chenopod shrublands of the Barkly Tablelands about every 10 to 20 years, which encourages a similar increase in its main predators, the letter-winged kite and barn owl.

The flock bronzewing is another Mitchell grassland species that sometimes occurs in large numbers.

Early explorers described huge flocks of this pigeon darkening the sky for hours as they flew over.


Videoya baxın: Что нужно сразу сделать в Австралии (Iyul 2022).


Şərhlər:

  1. Meztigami

    Bəli həqiqətən. Yuxarıda göstərilənlərin hamısı ilə razıyam. Bu mövzuda ünsiyyət qura bilərik.

  2. Hakem

    Hesab edirəm ki, siz haqlı deyilsiniz. PM-ə yazın, danışarıq.

  3. O'

    Hesab edirəm ki, yanılırsınız. Mən mövqeyi müdafiə edə bilərəm. PM-ə yazın, danışarıq.

  4. Marco

    Müdaxilə etdiyim şeyə görə üzr istəyirəm ... bu vəziyyət. Müzakirə etməliyik. Burada və ya axşam yazın.

  5. Paavo

    Məncə, səhv edirlər. Bunu müzakirə etməyə çalışaq. PM-də mənə yaz.

  6. Fenrisar

    What words ... great, remarkable idea



Mesaj yazmaq